在傳統生物技術行業（如抗體、疫苗領域）使用的下游純化工藝步驟，已經用于慢病毒的大規模下游處理。主要是基于膜(過濾/澄清，利用切向流過濾TFF進行濃縮/滲濾，基于膜的色譜)和色譜(離子交換色譜IEC，親和色譜AC，體積排阻色譜SEC)的技術。這些不同的過程步驟的組合是可變的，在某些情況下，不同的純化方法可以用于相同的目的。此外，采用benzonase/M-SAN HQ中鹽核酸酶降解污染的DNA或者用于下游的一個步驟，或者用于病毒生產階段。相比傳統的全能核酸酶，M-SAN HQ中鹽核酸酶在生理鹽條件下，對HCD的去除效率更高。江蘇M-SAN HQ中鹽核酸酶70950-150

慢病毒載體既可以轉導分裂細胞也可以轉導非分裂細胞，被認為是安全的，并且可以提供長期的轉基因表達，是目前較通用的基因轉移方法之一。因慢病毒載體能有效地轉導靶細胞，如造血干細胞和T細胞，在細胞和基因藥物中的應用越來越guang泛。源自人類胚胎腎細胞的HEK293細胞系是成熟的生產LV的系統，因為它們非常適合懸浮培養并且易于轉染。在無血清培養基中的懸浮培養在大規模生產中具有優勢，因為它消除了批次之間的差異并降低了不定因子污染的風險。江蘇上海倍篤生物中鹽核酸酶70950-150ArcticZymes致力于提供高質量產品，中鹽核酸酶具有好的批間一致性、穩定可靠的質量。

對于含包膜的病毒載體，如慢病毒LV、逆轉錄病毒RV等，在細胞培養上清液中收獲。而M-SAN HQ中鹽核酸酶，作為市場上更適合生理鹽條件的核酸酶，所以，M-SAN HQ成了包膜病毒載體生產的更好選擇。優勢在于：1. M-SAN HQ兼容多種細胞培養體系，在細胞培養鹽濃度條件下具有更優活性；2. M-SAN HQ酶活更高、酶切速度更快，縮短孵育時間；3. M-SAN HQ能夠高效剪切染色質到更小片段，簡化下游工藝流程；4. 相比Benzonase，M-SAN HQ用量減少1/2-2/3，降低了酶用量及生產成本。

?通過三質粒瞬轉體系生產病毒載體，會引入宿主細胞DNA殘留（HCD）、蛋白殘留（HCP）、工藝雜質（如antibiotics、核酸酶等外源物質）等污染，存在潛在的致瘤性和免疫原性等風險。藥品監管機構一般允許生物制品中存在10ng/dose以下的殘留DNA。此外，根據雜質來源、工藝以及產品類型不同，也會對HCD限度做不同要求。為了達到這個要求，一般通過核酸酶處理和色譜聯用的方法。一般在細胞培養液裂解/收獲、澄清收獲及超濾濃縮等環節加入核酸酶處理，需要工藝摸索來確認處理方式。中鹽核酸酶更適合細胞培養體系，相比全能核酸酶，酶用量減少到1/3-1/2，HCD去除效率更高。

在干細胞醫治領域， 某些疾病靠單純的細胞替代并不能取得滿意效果。利用逆轉錄病毒和慢病毒將外源目的基因整合到干細胞基因組，對基因功能缺失的遺傳病具有良好療效，但也存在一定致瘤風險。相比之下，CRISPR/Cas9基因編輯技術能夠精確實現基因敲入、敲除及堿基修復。因此， 采用CRISPR/Cas9基因編輯技術對干細胞進行基因改造，不僅能夠增加干細胞醫治的疾病范圍，也能更大程度地保證療效的安全性。目前，CRISPR/Cas9在干細胞醫治領域發揮著重要作用，同時更多由CRISPR/Cas9編輯的干細胞藥物正在開發中。M-SAN HQ中鹽核酸酶在細胞培養條件或生理鹽濃度下具有較高活性。湖南等滲條件中鹽核酸酶

在biopharma生產，如細胞基因medicine及vaccine生產中，宿主細胞DNA殘留是關鍵質量參數之一。江蘇M-SAN HQ中鹽核酸酶70950-150

除了獲得載體的滴度及產量，生產慢病毒更關心的指標主要是各種污染物的去除。總DNA污染的去除百分比在99.1-99.84%，總蛋白污染物的去除百分比在99.85-99.9%。針對宿主細胞的DNA（HCD）及蛋白（HCP），有報道其去除百分比分別為99.8%和99.4%。因為不僅殘存的DNA可能是個問題，而且DNA的大小以及由此引起的可能轉移整個有功能的開放閱讀框也是問題，因此監管機構對殘存DNA污染的分子量上限的要求越來越高。例如，FDA的指南‘生產用于傳染病適應癥的病毒疫苗的細胞基質和其他生物材料的特性和鑒定’中說明，殘留的細胞宿主的DNA片段不能超過一個功能基因的長度，估計在200bp左右。江蘇M-SAN HQ中鹽核酸酶70950-150

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